植物提取DNA的方法有多種，以下是兩種常見的方法：
簡單快速的方法。首先，將植物組織（如擬南芥）與編號一一對應，並做好標記。然後，將小鋼珠放入2毫升離心管中，剪取植物葉片放入離心管。在離心管中加入200微升的TPS Buffer，使用組織破碎儀破碎組織。破碎後的液體轉移到PCR管中，進行95°C熱擊15分鐘。接著，將其放置在冰上10分鐘。加入180微升雙蒸水混勻，然後放入負20°C冰櫃保存。使用前，從冰櫃取出融化後搖勻，離心取上清作為模板。這種方法操作簡便，適合快速大量提取植物組織DNA。但它的缺點是提取的DNA純度和濃度較低，不適合對純度或濃度要求較高的實驗。
氯仿提取法。首先，稱量一定量的植物組織（新鮮或乾燥的），進行預冷處理。將植物組織研磨成粉末狀。加入適量的提取液（如氯仿或其他溶劑），劇烈渦旋使樣品充分分散。然後進行水浴處理，期間多次拿出混勻以避免沉澱。水浴後，加入氯仿進行高速混勻。室溫下離心，轉移上清液至新的離心管中。加入適量的Buffer PBD至上清液中，用移液槍吸打幾次以打散沉澱團。將gDNA柱裝在收集管中，進行離心。倒棄濾液，把柱子裝回收集管。用無水乙醇稀釋後重複離心步驟。在65°C水浴鍋中預熱BD濾液。把柱子裝回收集管，離心後，將柱子轉移到新的1.5毫升離心管中。加入Buffer AE至柱子的膜中央，室溫靜置2分鐘，再進行離心以收集DNA。最後，將DNA保存於-20°C。
這兩種方法各有優缺點，適用於不同的實驗需求和條件。